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Notions d’anatomie-physiologie de 1^ère année. Cours de biochimie

Connaître et comprendre les pathologies les plus fréquentes afin de comprendre l’intérêt des examens biologiques et de réaliser les recherches biologiques en toute connaissance. Développer une démarche, un raisonnement scientifique sur base des connaissances anatomiques et physiologiques.

Notions générales : définition de l'état pathologique ; classification des pathologies ; manifestations d'une pathologie ; causes de maladie ; moyens de défense ; moyens thérapeutiques ; processus de réparation ; réaction tumorale.

Eau, électrolytes : équilibre hydrique ; régulation hormonale du bilan hydrique ; hypo-hypernatrémie et hypo-hyperkaliémie.

Déséquilibres acido-basiques : acidoses et alcaloses métaboliques et respiratoires.

Pathologie cardio-vasculaire : cardiopathies ischémiques ; insuffisance cardiaque ; hypertension artérielle ; thrombose, embolie.

Pathologie respiratoire : insuffisance respiratoire chronique et aigüe ; intérêt des analyses de laboratoire.

Pathologie digestive : système hépatobiliaire (test cytolyse, cholostase) ; cirrhose ; hépatite ; lithiase vésiculaire ; pancréatite.

Pathologie rénale : exploration rénale ; insuffisance rénale aiguë et chronique ; glomérulopathies ; tubulopathies.

Pathologie endocrinienne : pathologies thyroïdiennes (régulation, hypo-et hyperthyroïdie, goitre) ; pathologies de la surrénale (hypercorticisme, insuffisance surrénalienne) ; diabètes.

DURAND H. et BICLET P., Dictionnaire des examens biologiques et investigations para cliniques, Ed. Doin, Paris, 1991.

QUEVAUVILLIERS J., PERLEMUTER I., FOURRIER B., MICHEZ E., Cahiers de l’infirmière, Ed. Masson, Paris, 1991.

Connaissance préalable de la langue anglaise.

Lire, comprendre, interpréter et traduire les textes techniques et scientifiques relevant des spécialités étudiées par les étudiant(e)s.

Lire les revues scientifiques en langue anglaise et connaître d'autres sources d'informations que celles de langue maternelle.

Cette compréhension passe par l'étude d'un lexique spécifique et l'apprentissage de clés permettant de décoder correctement le texte.

- Etude de textes simplifiés

- Etude de textes authentiques: articles de revues scientifiques, protocoles de laboratoire, ...

- Révision parallèle de la grammaire (à perfectionner par le biais d'exercices à réaliser à domicile)

- Correction de la prononciation

Dictionnaire Robert & Collins Senior

GLADSTONE, Dictionnaire des termes de médecine.

www. granddictionnaire.com

www.wordreference.com

www.termiumplus.gc.ca

Lecture - Compréhension du sens du texte - Traduction (individuelle et/ou collective) - Exercices divers (CPO, CPL, Ex. O, Ex. E)

L'examen compte pour 70% et l'évaluation continue compte pour 30% (participation aux cours et réalisation des prépas).

Notions fondamentales de chimie générale, de chimie organique, de biologie cellulaire et de physiologie des principaux organes

Donner les bases théoriques nécessaires aux analyses de laboratoire (notamment en enzymologie) ; préparer les étudiants aux cours de pathologie et de chimie médicale ; comprendre l’importance et la variabilité des paramètres dosés en laboratoire.

Les protides : structure et propriétés physico-chimiques ; techniques d’identification et de séparation des acides aminés ; techniques de séparation et de purification des protéines.

Les enzymes : définition, classification et mécanisme d’action ; cinétique enzymatique ; mesure de l’activité enzymatique ; les coenzymes ; les inhibiteurs ; systèmes de régulation.

Etude des métabolismes.

· Bioénergétique (y compris la chaîne respiratoire et la phosphorylation oxydative).

· Métabolisme des glucides : glycolyse ; voie des pentoses phosphates ; glycogénogenèse et glycogénolyse ; néoglycogenèse.

· Le cycle de Krebs.

· Métabolisme des protides : catabolisme de l’azote et du chaînon carboné des acides aminés ; anabolisme des acides aminés ; métabolismes particuliers.

· Métabolisme des lipides : les lipoprotéines ; biosynthèse des acides gras, des triglycérides et des lipides complexes ; catabolisme des acides gras ; métabolisme du cholestérol ; les hormones stéroïdes et les prostaglandines.

Le sang : composition ; structure, propriétés et métabolisme de l’hémoglobine ; la fonction respiratoire.

L’équilibre acido-basique : systèmes chimiques et physiologiques de régulation ; paramètres d’évaluation de l’équilibre et typage de déséquilibres.

HARPER, Précis de Biochimie de Harper, Presses de l'Université Laval, 7ème Edition, 1989

MOUSSARD C., En bref, la biochimie, Ed. De Boeck, 1999.

RAWN J.D.,Traité de Biochimie, Ed. De Boeck Université, 1989

SCOPES R., Protein purification, Principles and Practice, Springer Verlag, 1982.

STRYER L., Stryer’s Biochemistry, W.H.Freeman, Oxford, 1995.

Bonne connaissance du cours théorique et des méthodes statistiques ; aptitudes au travail pratique

Approcher les connaissances théoriques de la technologie biochimique mais aussi acquérir un certain savoir-faire, apprendre à planifier un travail expérimental et à utiliser certains appareils, acquérir une rigueur expérimentale dans l'analyse et un sens critique dans l'exploitation des résultats.

Photométrie et spectrophotométrie d'absorption : notions théoriques (loi de Beer-Lambert, spectres d'absorption) ; manipulations (spectres d'absorption et calcul du coefficient d'absorption molaire, dosage de protéines et de l'hémoglobine)

Enzymologie : cinétique enzymatique (détermination de KM et VM ; inhibitions) ; optimalisation des dosages de l’activité enzymatique (influence des différents paramètres).

Techniques séparatives : séparations électrophorétiques ; chromatographie sur échangeur d’ions.

Dosages d'applications en chimie médicale : glucose sanguin ; métabolisme azoté (azote total urinaire par la technique de Kjeldahl, urée, créatinine, acide urique) ; bilirubine totale ; bilan d'équilibre acide-base (analyseur de gaz sanguins).

PLUMMER D.T., Introduction aux techniques de Biochimie, Ed. McGraw-Hill, Paris, 1989

AUDIGIE Cl., DUPONT G., ZONSZAIN F., Principes des méthodes d'analyse biochimique, t. 1 et 2, 4e Ed., Ed. Doin, Paris, 1993

GAVRILOVIC M., MAGINOT M.J., SCHWARTZ-GAVRILOVIC L., WALLACH J., Manipulations d'analyse biochimique, 3e Ed., Ed. Doin, Paris, 1996

Travaux pratiques et exercices numériques

Examens pratique et écrit.

Cours de chimie générale

Connaître les principales méthodes d'analyse qualitative, quantitative, structurale et séparative en particulier dans le secteur biomédical ainsi que leurs limites. Acquérir les qualités d'analyste. Savoir interpréter de manière critique les résultats.

Classification, définition des méthodes de chimie analytique et critères de choix d'une méthode analytique.

Erreurs dans les analyses chimiques.

Expression de la concentration des solutions (molarité analytique; normalité ; concentration massique, titre d'une solution, ppm et ppb, fonction p) et calculs de dilution.

Gravimétrie : définition ; intérêts et inconvénients ; méthodes gravimétriques et propriétés des solutions colloïdales et cristallines.

Titrimétrie: définition ; conditions pour qu'une réaction chimique soit utilisable à des fins titrimétriques ; modes de titrages et modes de détection du point équivalent ; appareils de mesure titrimétriques ; substance étalon et solutions étalons;

examen systématique des conditions de titrage relatives aux différentes réactions : réactions acide–base (calculs de pH par les formules approchées et par les formules non approchées (diagramme de Flood) et courbes de titrage acide-base); ; réactions par oxydo-réduction (facteurs influençant le potentiel redox et courbes de titrage par oxydo-réduction); réactions par précipitation (facteurs influençant la solubilité d'un précipité et courbes de titrage par précipitation et méthodes de titrage) ; réactions par complexation (influence du pH et la présence de ligands sur la stabilité d'un complexe et courbes de titrage par complexation).

Méthodes électrochimiques : électrogravimétrie ; potentiométrie ; polarographie ; ampérométrie ; coulométrie ; conductimétrie.

Méthodes spectrales d'analyse : spectre atomique et spectre moléculaire, domaines spectraux et phénomènes correspondants, méthodes spectrales, appareils de spectroscopie et leur équipement ; les rayons X ; l' U.V.-Visible (absorption et émission) ; la spectroscopie atomique (émission et absorption);la spectroscopie infra-rouge ; la résonance magnétique nucléaire, la résonance paramagnétique électronique, la spectrométrie de masse

Techniques de séparation : séparation avec et sans transformation des analytes ; séparation par chromatographies (chromatographie gazeuse et chromatographie liquide haute performance) et par électrophorèse

FUGER, GILBERT et MERCINY, Chimie analytique, Ulg, 1998.

Abrégé de chimie analytique (tome I à III). Masson, 1990.

Chimie analytique, Ed. De Boeck Université, 1997

Atlas de poche des méthodes d'analyse, Flammarion Médecine-Science, 1999.

Analyse chimique : méthodes et techniques instrumentales modernes,Dunod, 2004.

Principes d'analyse instrumentale. Ed. De Boeck, 2003

Chimie analytique: équilibre en solution, Dunod, 2004.

Electrochimie: des concepts aux applications, Dunod, 2005.

Analyse chimique quantitative de Vogel, Ed. De Boeck Université, 2006.

Cours de chimie générale

Approfondir les connaissances au niveau du laboratoire de chimie analytique.

Approfondissement du programme commun par les manipulations suivantes:

Technoiques gravimétriques : dosage du fer dans le sulfate ferreux, dosages du calcium, du magnésium et des ions sulfates.

Techniques titrimétriques: dosage des ions calciques par manganimétrie, dosage du sel disodique de l'EDTA par les ions nickel.

Techniques électrochimiques: par électrogravimétrie (dosage des ions nickel), par potentiométrie (dosage d'une solution de bicarbonate de sodium et dosage d'une solution de sel disodique de l'EDTA par pHmétrie).

Techniques spectrales: dosage d'une solution de sulfate de sodium par turbidimétrie, dosage simultané du chrome et du manganèse dans une solution de dichromate et de permanganate par spectrophotométrie UV-visible

Florilège de chimie pratique, Edition Hermann Collection enseignement des sciences, 1999.

Initiation aux techniques d'analyse de laboratoire de chimie, Edition IUT BTS UPA, 1999.

Guide pratique de laboratoire de chimie pour Ciba Geigy, Livre total Lausanne et Polytechnica Paris, 1990.

Chimie analytique, Edition De Boeck Université, 1997.

Travaux pratiques d'analyse qualitative et d'analyse quantitative, Edition Nathan Technique, 1969.

Recueil de manipulations, Centre technique de l'Enseignement de l'état, 1983.

Travaux pratiques et exercices d'application numériques

Evaluation continue pour les travaux pratiques. Examen pratique. Examen théorique écrit.

Bonne connaissance des différents cours de chimie et biochimie, de biologie et de physique.

Etre apte à comprendre et appliquer en situation réelle les principes de la radioprotection et faire face à des situations critiques.

Répondre à l’article 53.2 de l’A.R. du 20/07/2001 concernant l’obligation de formation des auxiliaires médicaux.

Radiobiologie :

• Sources et niveaux d’irradiation humaine
• Interactions des radiations ionisantes avec la matière
• Conséquences des rayonnements ionisants au niveau cellulaire, moléculaire et tissulaire.

Législation et radioprotection :

• Définition et cadre légal de la radioprotection
• Principes fondamentaux de radioprotection
• Mesures de radioprotection vis-à-vis du patient et du soignant

Techniques appliquées en médecine nucléaire

• Eléments de physique nucléaire
• Principe général de la scintigraphie
• Marqueurs et traceurs
• Techniques de détection
• Tomographie à émission de positons
• corruption de l'image d'émission
• Scintigraphies osseuse, rénale au DMSA, thyroïdienne

Contrôle de qualité : procédures de contrôle des équipements utilisés.

DUTREIX J., DESGREZ A., BOK B., VINOT J.-H., Biophysique des radiations et imagerie médicale, 3^e Ed., Masson, 1993.

ERICH KRESTEL-SIEMENS AKTIENGES, Imaging systems for medical diagnostics, 1990.

GALLE P., PAULIN R., Biophysique, Radiobiologie, Radiopathologie, Ed. Masson.

WEBB S., The physics of medical imaging, Medical Science Series, 1996.

Visite d'un service de médecine nucléaire (2h)

• Notions d'histologie et de cytologie sanguine.
• Pouvoir utiliser correctement un microscope optique.

• Réaliser diverses techniques réalisées couramment en laboratoire en comprenant leur principe
• Développer une analyse critique des procédures employées afin d'optimiser les résultats
• Répéter un maximum de fois les examens dits "de routine" afin de maitriser au mieux les critères différentiels des différents types de cellules

• Introduction : Le sang et ses composants
• Numération sanguines (cellule de Thoma)
• Frottis sanguins et formules hémo-leucocytaires
• Groupages sanguins ABO et Rhésus
• Test de compatibilité
• Réticulocytoses : frottis et lectures

Approche conviviale et respectueuse du patient. Règles d'hygiène hospitalière. Utilisation des mesures de prévention. Réalisation d'une ponction veineuse. Communication avec le patient afin d'améliorer sa collaboration et créer une détente réciproque

Introduction

• Sensibilisation aux notions d'hygiène hospitalière.
• Initiation aux manipulations aseptiques.
• Les antiseptiques.
• Notions relatives aux expositions accidentelles au sang 

Techniques

• Prélèvement d'un produit quelconque contenu dans un flacon, une flapule ou une ampoule.
• Prélèvement sanguin (ponction veineuse)
• Entraînements dirigés et mise en situation
• Surveillance du patient par la prise des pulsations et de la pression artérielle

Bonne connaissance du cours de première année.

Apprendre les phénomènes et les lois de la physique et leurs applications avec extension vers les autres sciences. Former à la mesure, à son environnement et à son traitement. Comprendre les appareillages et les techniques rencontrées dans les laboratoires cliniques.

Constitution de la matière : particules élémentaires (modèle standard) ; noyaux ; atomes et molécules (mécanique quantique).

Emission de rayonnements : luminescences ; laser ; radioactivité et rayonnements émis.

Interaction des rayonnements non-ionisants et ionisants avec la matière ; réactions nucléaires ; réacteurs nucléaires ; accélérateurs de particules.

Caractérisation (source, rayonnement et objet irradié) et détection des rayonnements ionisants ; dosimétrie.

Rayons X (applications).

Microscopies électroniques et confocale.

Spectrométries

Excercices sur les radiodosages

BLANC D. et PORTAL G., Physique nucléaire, Masson 1993

CAMERON J.R. et SKOFRONICK J.G., Medical Physics, Wiley, 1978

GALLE P. et PAULIN R., Biophysique (radiobiologie et radiopathologie), Masson, 1992

KANE J. et STERNHEIM M., Physique, Dunod, 1999

SCHOEFF L.E. et WILLIAMS R.H., Principles of Laboratory Instruments, Mosby, 1993.

Savoir utiliser un microscope optique, faire des dilutions, des pesées etc. (manipulation de base en chimie).

Avoir assimilé les cours de biologie, chimie organique et histologie de 1ère année

Etre capable de régler le microtome si celui-ci fournit des coupes de mauvaise qualité

Etre capable d'enchâsser des tissus

Pouvoir s’intégrer dans un laboratoire d’anatomo-pathologie

Savoir traiter un échantillon cytologique

Le microtomie et la cryotomie.

Colorations des fibres conjonctives, des lipides, des protéines, des acides nucléiques.

Le contrôle de qualité en histotechnologie.

La cytogénétique

Microscopie électronique.

Imuno-histochimie.

La cytologie et les colorations associées

Réalisations pratiques (prélèvements, fixations, inclusions, enrobages, coupes, colorations histologiques, histochimiques et enzymatiques) ; réalisation d'un travail individuel et visite d’un laboratoire de microscopie électronique.

Bancroft J., Gamble M., Theory and practice of histological techniques, Chruchill Livingstone, 2005, 796 p

Fortier J, Hould R., Histotechnologie, théorie et procédés, CCDMD, 2003, 717 p

Carson F., Histotechnology, a self-instructional text, ASCP Press, 1997, 304 p

Gabe M., Techniques histologiques, Masson, 1968

Stevens A., Lowe J., Histologie humaine, De Boeck Université, 1997, 536 p

Evaluation continue. Examens écrit et pratique.

Notions générales de chimie analytique, générale et organique et de biochimie.

Connaître les principaux solvants que l'on retrouve en milieu professionnel ou domestique. Comprendre leur toxicité et reconnaître les indices de cette toxicité. Comprendre les méthodes de dosage des solvants et de leurs métabolites.

Toxicité des solvants : voies de pénétration des toxiques dans l'organisme ; propriétés physico-chimiques des solvants ; indices et symboles de toxicité ; solvants organiques (alcools, glycols, cétones, éther, hydrocarbures aliphatiques et aromatiques.

Méthodes de dosage des solvants dans le sang.

Méthodes de dosage des métabolites urinaires

CONSTANTIN E., Spectrométrie de masse : principes et applications, 2e Ed., Ed. TEC et DOC, Paris, 1996

GERHARDS P., BONS U. SAWASKI J. et al., GC/MS in clinical chemistry, Ed. Wiley-VCH, Weinheim, 1999

KINTZ P., éditeur, Toxicologie et Pharmacologie Médico-légale, Ed. Elsevier, 2001.

ROSSET R., CAUDE M. et JARDY A., Manuel pratique de chromatographie en phase liquide, 2e Ed., Masson, Paris, 1982

Biochimie Générale et Biologie cellulaire

Acquérir les notions de base nécessaires à la compréhension des principales méthodes d’analyse génétique, de clonage moléculaire et de transformation des cellules.

· Composition, structures et propriétés des acides nucléiques

· Organisation des gènes et des génomes

.Expression des gènes ; mécanismes de régulation ( procaryotes et eucaryotes )

.Hybridation moléculaire

.Amplification in vitro

.Séquençage de l'ADN

.Description et propriétés des vecteurs de clonage

.Clonage dans E.coli ( vecteur plasmide )

.Synthèse de protéines recombinantes ( ADN complémentaire et systèmes d'expression )

.Sujets d'actualité: analyses génétiques, thérapie génique, OGM...

ETIENNE J., Biochimie génétique, Biologie moléculaire, Ed. Masson, 2000.

PRIMROSE et al., Principes du génie génétique, Ed. de Boeck, 2004

KAPLAN J.J. et DELPECH M., Biologie moléculaire et médecine, Ed. Flammarion,2007.

Connaissance du cours théorique et aptitudes au travail pratique en laboratoire de biochimie et bactériologie

Apprentissage des manipulations de base de la biologie moléculaire

Extractions d'ADN

Utilisation des enzymes de restriction

Electrophorèse d'ADN

Techniques d'hybridation 

Amplification in vitro

Réalisation d'un clonage dans E.coli

Génie Génétique, D. Loncle et al., Ed. Doin, 1993

Connaissances d'histologie générale et d'anatomie acquises en première année TLM

Appliquer les notions d'histologie acquises en première année et établir des relations entre la structure et les fonctions des différents organes. Acquérir les connaissances de bases utiles aux cours de pathologie. 

Histologie fonctionnelle, humaine du:

- système digestif

- système respiratoire

- système reproducteur masculin et féminin

- système urinaire

 Stevens A. et Lowe J.: Histologie humaine, 1997, ED. DE BOECK, UNIVERSITE

 Weather, Young, Heath : Histologie fonctionnelle, 2001, 4^ème EDITION. De Boeck Université

Notions de base en biologie cellulaire et en biochimie

Connaître le vocabulaire médical de base et les pathologies hématologiques.

Hématologie : composition du sang et méthodes de prélèvements ; hématopoïèse ; hémogramme ; principales anomalies du « sang complet » ; lymphomes ; myélome ; leucémies.

Coagulation et hémostase : physiologie ; exploration ; indications et interprétations des tests de coagulation.

Immunohématologie. : groupes sanguins humains ; transfusion sanguine ; maladie hémolytique du nouveau-né ; préparation et utilité des dérivés du sang.

Test de Schilling

Abrégés d’hématologie, Masson, ISBN 2-225-83567-5, 9^ème éd., 1998.

A color atlas and instruction manual of peripheral blood cell morphology, Williams and Wilkins, ISBN 0-683-06624-2, 1984.

Les groupes sanguins ou l’écriture des gènes, Masson, ISBN 2-225-85450-5, 1997.

Hémostase et thrombose, ISBN 2-902559-12-7, 4^ème éd.,1994.

Cours de biologie, introduction à la microbiologie, chimie, mathématiques et physique de première année.

Cours de biochimie.

Apprendre à maîtriser la technologie bactériologique et à travailler dans des conditions de stérilité. Mettre en pratique les notions théoriques en étudiant les éléments de diagnostic et de thérapeutique de certains germes courants en pathologie humaine.

Généralités sur la technique bactériologique, le laboratoire et le matériel en bactériologie. La stérilisation.

L’examen microscopique des bactéries à l’état frais et après coloration.

Les milieux de culture (classification, préparation et répartition).

La croissance bactérienne : aspects qualitatif et quantitatif ; techniques d’ensemencement ; prélèvement de colonies isolées ; incubation des cultures ; techniques de numération et de dénombrement.

Etude du métabolisme bactérien et tests biochimiques : respiration bactérienne ; métabolismes glucidique, protéique et lipidique.

Etude de la sensibilité des bactéries aux antibiotiques.

Techniques d’étude et d’identification des microorganismes appartenant à quelques familles et genres.

AVRIL J.L., Bactériologie clinique, Ellipses, 1992.

BERCHE P. et al, Bactériologie, Flammarion Médecine-Sciences, 1988.

Travaux pratiques

Evaluation continue.

Examens pratique et écrit

Bonne connaissance de la biologie cellulaire et de la chimie organique. Bonnes notions de l’anglais. Pratique de laboratoire de base.

Acquérir des connaissances de base en immunologie et plus particulièrement sur la génération et la production des anticorps, sur leur utilité au niveau diagnostique, thérapeutique et en recherche fondamentale. Acquérir les notions de base des techniques d'analyse immunologique (qualitatives et quantitatives) destinées au diagnostic médical et à la recherche fondamentale en biologie humaine et animale ; savoir les adapter en fonction des besoins. TP: réaliser un western blot.

Bases de l'immunologie (réponse innée et adaptative, réponse inflammatoire, cellules immunitaires).

Bases cellulaires de la formation des anticorps.

Isolement, purification et structure des immunoglobulines.

Réaction antigène-anticorps.

Les vaccins, production d'anticorps monoclonaux et polyclonaux.

Dosages : radioimmunologique (RIA) et immunoenzymatique (EIA et ELISA).

Immunohistochimie et immunocytochimie (en visible, en fluorescence, marquages multiples).

westernblot, coimmunoprécipitation, FACS.

TP: mise en pratique d'un western blot.

JANEWAY C.A., Immuno Biology, Garland, 2001

Immunologie, Le cours de Janis Kuby, Dunod

Delves, Martin, Burton, Roitt, Fondements de l'immunologie, de boeck, 2008

Les connaissances de base nécessaires à la compréhension du cours de microbiologie sont normalement acquises par l'étudiant qui a réussi la première année. Celles-ci comprennent, outre les notions vues au cours d'introduction à la microbiologie, des matières abordées aux cours de biologie, biochimie, chimie, mathématiques et physique.

Au terme du cours, l'étudiant sera capable de comprendre le rôle et l'importance des microorganismes chez l'homme ainsi que dans son environnement. Le cours sera particulièrement orienté vers les virus et les infections dont ils sont responsables chez l'homme.

Virologie :

Introduction et historique

Caractéristiques générales et reproduction des virus,

Bactériophages et lysogénie

Virus eucaryotes et virus oncogènes

L'infection virale et exemples de pathologies humaines

Moyens de lutte contre les virus.

PRESCOTT, HARLEY, KLEIN, Microbiologie, Ed.De Boeck, 1995

SCHAECHTER, MEDOFF, EISENSTEIN, Microbiologie et Pathologie Infectieuse, Ed. De Boeck, 1999

 M. Madigan et J. Martinko, Brock, Biologie des microorganismes, Pearson education, 2007.

Dossiers "Pour La Science" : "Les maladies émergentes", 1995 et "Les défenses de l'organisme", 2000, les Virus, ennemis utiles, juin 2007.

www.microbes-edu.org

Cours magistraux avec illustration par transparents et vidéo.

Notions de base de biologie générale et cellulaire, biochimie, anatomie-physiologie, histologie, immunologie et génétique.

Connaître les notions générales de parasitologie: morphologie et biologie des parasites protozoaires, animaux et fongiques; principales maladies parasitaires chez l’homme et méthodes de diagnostic de laboratoire de ces maladies.

Helminthologie

· Introduction théorique à la biologie des helminthes et à la pathologie associée

· Examen de préparations macroscopiques et microscopiques.

Entomologie

· Introduction théorique à la biologie des insectes et acariens et à la pathologie associée

· Examen de préparations macroscopiques et microscopiques.

Protozoologie

· Introduction théorique à la biologie des protozoaires et à la pathologie associée

· Examen de préparations macroscopiques et microscopiques.

Mycologie

· Introduction théorique à la biologie des champignons et à la pathologie associée

. Examen de préparations macroscopiques et microscopiques.

ANAISSIE E.J., McGINNIS M.R. and PFALLER M.A., Clinical Mycology, Philadelphia, 2003.

ROBERTS L.S. et JANOVY J.J., Foundations of Parasitology, 6^th Ed., Singapour, 2000.

MEHLOHM H., Encyclopedic reference of Parasitology, Berlin, 2001.

URQUHART G.M. et al., Veterinary Parasitology, 2^nd Ed., Blackwell Science, Oxford, 1996.

KREIER J.P. et BAKER J.R., Parasitic Protozoa, Allen and Unwin, London, 1987.

VANBREUSEGHEM A., DE VROEY C. et TAKASKIR M., Guide pratique de Mycologie médicale et vétérinaire, 2^e Ed., 1978.

WALKER A., Arthropods of humans and domestic animals, 1^st Ed, London, 1994.

SERVICE M.W., Medical Entomology, Chapman and Hall, 1996, London.

Cours magistraux (22 h) – Travaux pratiques (8 h)

Examens écrit et pratique

Aucun

Rédiger un rapport, un mémoire, regrouper, trier des données dans un tableau et en tirer des graphiques, consulter Internet pour y rechercher des informations font désormais partie du travail quotidien de l'étudiant.

Les traitements de texte, les tableurs, les présentations assistées par ordinateur, ... sont devenus des outils incontournables que les étudiants d’aujourd’hui doivent pouvoir maîtriser. Parallèlement, Internet est devenu une source inépuisable d'informations où naviguer sans se perdre relève parfois de la gageure.

A l'instar de son importance dans le cursus scolaire, l'informatique tient une place de plus en plus grande dans la vie professionnelle. On la retrouve au niveau de la gestion de sa patientèle, de sa comptabilité, dans des logiciels spécialisés, etc...

Les outils de la suite bureautique OpenOffice.org 3.1 :

✘    Le traitement de texte OpenOffice Writer :

L’ensemble des fonctionnalités nécessaires à la rédaction d’un travail de fin d’études sont abordées (styles et formatage, table des matières, bibliographie, gestion des images, …)

✘    Le tableur OpenOffice Calc

Application à la diététique : réalisation d’une anamnèse

✔   Construction de feuille de calculs complexes

✔   Formules (adresses relatives et absolues) et fonctions (statistiques)

✔   Diagrammes

✘    Logiciel de PAO : OpenOffice Impress

Logiciels spécifiques à la biologie médicale

✘    Le logiciel Chemsketch 12.0

Internet et les outils WEB 2.0

1. VonHoegen H. et Kamenz A. Le grand livre d'Excel 97, Edt. Micro Application

2. Mincke M. Excel, un outil pour les cours de sciences, Edt. Ressources

3. Werverka P. Word 2003 pour les nuls, Edt. First Interactive, Paris 2004

4. Banfield C. et Walkenbach J. Excel 2003 pour les nuls, Edt. First Interactive, Paris 2004

Cours magistraux. Travaux pratiques